管理您的动物护理和使用协议
为了使用动物进行研究、教学或测试，动物使用者必须履行与此特权相关的所有义务。 这些义务包括：
ARF 手术设施
所有物种的手术、存活和非存活的一般要求在详细摘要中进行了描述， 《一般外科指南》. 第二个摘要题为 《啮齿动物手术指南》 描述了涉及实验室啮齿动物的手术的具体信息和要求。
生存手术指南
生存手术，无论物种如何，都必须在无菌条件下进行。 对比实验室大鼠大的非啮齿类动物的手术程序必须在专用的手术设施（ARF 手术设施）中进行。 所有物种的手术、存活和非存活的一般要求在详细摘要中进行了描述， 《一般外科指南》. 第二个摘要题为 “啮齿动物手术指南” 描述了涉及实验室啮齿动物的手术的具体信息和要求。 一般来说，无菌技术、适当的麻醉和镇痛、充分的术中患者监测以及术后护理的规定是对所有物种进行生存手术的最低要求。 无菌手术原则涉及以下内容：器械消毒、外科医生准备、手术部位准备以及从皮肤切口到闭合的所有外科手术。 麻醉监测势在必行，并且必须记录在比小鼠和大鼠更大的物种中。
非生存（终末、急性）手术指南
非生存手术定义为在全身麻醉下进行的手术，患者未从麻醉中恢复过来。 安乐死在实验性手术程序结束时进行，通常使用过量的麻醉剂，静脉注射。 非存活手术需要使用干净的器械，并规定对麻醉深度进行充分监测。
小程序如注射、口服给药、观察、称重等可在动物房内进行。 ARF 为手术室提供吸入麻醉剂、诱导室、鼻锥、废气清除装置和恢复装置，用于那些可能需要麻醉以进行约束或固定的手术，例如采血、活检、静脉注射等。
处理和约束所有动物，尤其是啮齿动物，是一种通过实践和适当培训发展起来的技能。 应以温和、坚定和快速的方式约束动物，以尽量减少对被约束者和约束者造成压力和伤害的可能性。 ARF 为需要介绍正确约束方法的个人提供“实践”研讨会。
所有研究动物住房和饲养均由 ARF 工作人员根据 实验动物护理和使用指南. 如果 IACUC 批准的协议描述了非标准住房条件，则必须将豁免通知 ARF 工作人员。 标准操作程序 (SOP) 必须由研究人员制定，经 ARF 兽医批准，并张贴在动物房中。 如果 PI 负责动物的饲养，则必须在房间内张贴日志/记录表，记录研究人员执行的饲养职责。
实验动物安乐死
安乐死是诱导人道死亡的行为。 在实验室动物中，安乐死是任何实验最常见的终点。 研究人员必须在尊重动物生命的情况下进行安乐死，并理解在手术过程中必须尽量减少疼痛、焦虑和痛苦。 用于安乐死的技术应确保迅速失去知觉，然后停止心脏和呼吸功能，最后，失去大脑活动。 无论选择哪种方法，都必须考虑减少与手术相关的压力和焦虑。 美国兽医协会安乐死指南在 2020 年编制了一份报告。该报告包含每个物种的具体指南，以及可接受的安乐死方法。 在以下位置查看此报告： http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. 为了对动物进行安乐死，个体必须经过充分的培训并能够胜任该程序。 安乐死方法必须在 IACUC 批准的动物护理和使用协议中详细说明。 使用的方法必须包括确保发生死亡的措施； 动物没有机会恢复和恢复意识。 培训可通过 ARF 或动物护理与合规办公室获得。
小鼠和大鼠胎儿和新生儿的安乐死
晚期胎儿和新生啮齿动物能够经历疼痛和痛苦。 必须考虑对晚期胎儿和新生儿进行人道安乐死的额外要求。 NIH 动物研究咨询委员会制定了 啮齿动物胎儿和新生儿安乐死指南. 查看这些建议，以确定可接受的小鼠和大鼠胎儿和新生儿安乐死方法。
使用二氧化碳安乐死啮齿动物
二氧化碳窒息是对小型啮齿动物（例如小鼠和大鼠）实施安乐死的最常用方法。 必须采用适当的方法来减少与高浓度 CO 相关的焦虑、痛苦和疼痛的可能性2. 美国国立卫生研究院动物研究咨询委员会发表了 使用二氧化碳对啮齿动物进行安乐死的指南. ARF 已将这些建议作为 SOP（标准操作程序）发布在 CO2 站附近的 ARF 中。 如果一氧化碳2 安乐死用于研究实验室，PI 必须向 ARF 索取适当的设备，并发布 ARF 提供的 SOP。
动物资源设施授权访问。 大学医院发行 ID 卡，HSC Lock Shop Technologies 发行钥匙。
动物资源设施授权访问。 大学医院发行 ID 卡，HSC Lock Shop Technologies 发行钥匙。
ARF 负责所有研究动物的采购。 所有关于动物的请求和所有动物订单只能由 ARF 办公室提出。 所有使用动物的请求和查询都应直接提交给 ARF 办公室。 采购动物的程序详述如下：
为了从其他学术或研究机构接收动物，转移必须首先得到 HSC ARF 主治兽医的批准。 该批准基于对动物健康和 SPF（无特定病原体）状态的确定。 为了完成此评估，HSC ARF 兽医必须审查由原始机构兽医工作人员提供的健康监测报告。 动物转运程序：
在 ARF 内饲养的所有动物都必须按照现行的、IACUC 批准的动物护理和使用协议进行饲养。 如果您希望将动物从一种协议转移到另一种协议，您必须知道动物协议编号是什么。 如果动物从一个 PI 转移到另一个 PI，根据批准的协议，PI 名称和协议编号必须可用。
适当的动物模型的选择将基于与疾病或健康问题的性质相关的几个因素。 遗传、疾病易感性、大小的作用； 在选择最适合研究目标的动物时，应考虑解剖学和生理学的相似性。 兽医工作人员可以咨询，以协助研究人员做出正确的选择。 人道动物研究的原则要求研究人员选择适合研究目标的最没有感知力的物种。
自人类、小鼠和大鼠基因组计划完成以来，小鼠和大鼠已成为生物医学研究中最常见的动物模型。 建议使用以下站点来获取基因型可用性和表型信息。 这些网站包含有助于决定合适的动物模型的信息：
HSC 动物研究计划在美国农业部 (85-R-0014) 注册为研究机构，在 PHS / OLAW (A3350-01) 有存档保证书，并获得美国评估和认证协会的完全认可国际实验动物保护组织（AAALAC 认证单位文件编号 000222）。
ARF 是 AAALAC 认可的，并遵守 PHS 政策中关于实验动物护理和使用的所有规定、实验动物护理和使用指南、动物福利法和实施条例。
对于向 NIH 提交的涉及脊椎动物的提案，请提交“脊椎动物部分 (VAS) 审查工作表”（http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) 应被引用以确保提供必要的动物计划信息。 NIH 发布了额外的 VAS 准备指南（http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf)，日期为 18 年 2012 月 3 日。此外，ARF 提供了一个样板模板，以支持本文件第 5-XNUMX 段要求的信息。 ARF 样板清单.
UNM HSC 拥有 40,000 平方英尺。 动物资源设施 (ARF) 空间，由获得实验动物医学学院 (ACLAM) 董事会认证的 DVM 和医学院病理学系教员 Kevin O'Hair 指导。 ARF 位于基础医学科学大楼 (BMSB) 和生物医学研究设施 (BRF) 的连续底层。 ARF 作为当前科学研究必不可少的无特定病原体 (SPF) 设施进行维护，并包含用于繁殖实验室小鼠的专门屏障设施。 ARF 还为所有利用实验动物的教育和研究项目提供技术和兽医支持。 ARF 包括动物饲养区和特殊用途区域，如治疗室、程序实验室、成像、生物危害和化学暴露研究区、手术室和屏障啮齿动物饲养室。 动物护理计划由 Christie Wilcox、AS、RLATG、运营经理和六名实验室动物技术人员提供支持。
专业设施：
健康科学中心的所有动物都饲养在动物资源设施 (ARF) 管理的设施中。 动物房室受温度和湿度控制。 该设施由一名全职兽医 Tara G. Ooms Konecny、DVM、DACLAM（ARF 主任和主治兽医）领导，并配备一名设施主管 (RLATG)、3 名高级动物护理技术员 (LAT) 和 7 名动物护理技术员； ARF 主任或紧急临床兽医随时待命。 动物护理人员执行常规饲养程序（例如，清洁笼子、喂食和饮水）并每天检查动物以评估它们的状况。 临床观察室表由动物护理人员每天填写并发送给运营经理。 当报告临床问题时，这些报告将转发给兽医。 实验室工作人员在给予治疗时监测动物，并在根据预期发病率确定必要时并根据相应的 IACUC 批准协议的要求记录个体动物手术后状况评分。 兽医人员每两周或在动物护理或实验室工作人员报告临床问题时立即监测其笼中的动物。 如果动物表现出任何感染、疾病或痛苦的迹象，兽医人员会与实验室人员协商，以推荐适当的抗生素、止痛药或其他药物/支持性护理。 兽医可能会根据动物福利问题进行干预或建议安乐死。
ARF 主任负责兽医护理计划的管理、设施管理的监督、监督、培训和合规性。 兽医护理计划包括对所有动物的健康监测、啮齿动物种群的特定质量保证计划、检疫测试计划和特定治疗指南的规定。
ARF 主任还为提交给机构动物护理和使用委员会的所有教育和研究协议提供兽医审查和咨询。
